1.一种双酶偶联合成(S)‑香茅醇的方法，其特征在于所述方法为：以含醇脱氢酶YsADH基因的工程菌和含老黄酶NemR‑PS基因的工程菌各自经发酵培养获得的湿菌体混合后作为+催化剂，以橙花醇为底物，以NADP 为辅酶，以pH 6‑9缓冲液为反应介质构成反应体系，在

25‑55℃、0‑900 rpm条件下反应完全后，反应液分离纯化，最终获得(S)‑香茅醇；

所述醇脱氢酶YsADH基因核苷酸序列为SEQ ID NO.2所示；老黄酶NemR‑PS基因核苷酸序列为SEQ ID NO.4所示；

所述含醇脱氢酶YsADH基因的工程菌按如下方法构建：将醇脱氢酶YsADH编码基因插入pET28b载体的Nco I和Hind III限制性酶切位点，得到重组载体pET28b‑YsADH；将重组载体pET28b‑YsADH导入宿主细胞E. coli BL21(DE3)，得到基因工程菌E. coli BL21(DE3)/pET28b‑YsADH；

所述含老黄酶NemR‑PS基因的工程菌按如下方法构建：将老黄酶NemR‑PS编码基因插入pET28b载体的Nco I和Xho I限制性酶切位点，得到重组载体pET28b‑NemR‑PS；将重组载体pET28b‑NemR‑PS导入宿主细胞E. coli BL21(DE3)，得到基因工程菌E. coli BL21(DE3)/pET28b‑NemR‑PS。

2.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述含醇脱氢酶YsADH基因工程菌的湿菌体与含老黄酶NemR‑PS基因工程菌的湿菌体以质量比0.25‑4:1混合，所述催化剂加入量以湿菌体总量计为120 g/L。

3.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述底物以1 M橙花醇乙醇溶液形式加入，所述橙花醇加入终浓度为10‑100 mM；所述辅酶加入终浓度0.6mM。

4.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述缓冲液为pH 7.5的50 mM Tris‑HCl缓冲液。

5.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述含醇脱氢酶YsADH基因工程菌的湿菌体按如下方法制备：将含醇脱氢酶YsADH基因的工程菌接种于含有终浓度100 μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，在37℃和200 rpm下培养过夜，然后以体积浓度2％的接种量转接于含有

100 μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，在37℃和200 rpm培养至菌体浓度OD600至0.6～

0.8，向培养物中加入终浓度0.2 mM的IPTG，在21℃下诱导培养12 h，获得诱导培养液；再将诱导培养液于4℃和8000 rpm下离心10 min，弃去上清液；然后用pH 8.0、50 mM Tris‑HCl缓冲液重悬菌体，于4℃和8000 rpm下离心10 min，弃去上清液，收集湿菌体。

6.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述含老黄酶NemR‑PS基因工程菌的湿菌体按如下方法制备：将含老黄酶NemR‑PS基因的工程菌接种于含有终浓度100 μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，在37℃和200 rpm下培养过夜，以体积浓度2％的接种量转接于终浓度100 μg/mL卡那霉素的LB液体培养基中，在37℃和200 rpm培养至菌体浓度OD600至0.6～0.8，向培养物中加入终浓度0.2 mM的IPTG，在24℃下诱导培养12 h，获得诱导培养液；再将诱导培养液于4℃和8000 rpm下离心10 min，弃去上清液；然后用pH 8.0、50 mM Tris‑HCl缓冲液重悬菌体，于4℃和8000 rpm下离心10 min，弃去上清液，收集湿菌体。

7.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述反应液分离纯化方法为：反应液在12000 rpm下离心2 min，取上清，加入4倍反应液体积的乙酸乙酯，在200 rpm和30℃条件下萃取1 h，萃取结束后，在12000 rpm下离心1 min，取上层有机相，经减压蒸馏去除乙酸乙酯，最终获得(S)‑香茅醇。