1.一种高产β‑丙氨酸的大肠杆菌益生菌，其特征在于，所述大肠杆菌益生菌以野生型大肠杆菌益生菌E. coli Nissle 1917为出发菌株，依次进行下列基因编辑：Trc启动子强化内源panD基因，在质粒pTrc99a上过表达来源于枯草芽孢杆菌的panD基因，Trc启动子强化aspC基因，在质粒pTrc99a上过表达来源于谷氨酸棒状杆菌的aspB基因，在质粒pTrc99a上过表达aspA基因，Trc启动子强化sdhC基因，Trc启动子强化ppc基因，在质粒pTrc99a上过表达来源于谷氨酸棒状杆菌的pyc基因，敲除cycA基因；所述大肠杆菌益生菌含有所述质粒pTrc99a；

所述来源于枯草芽孢杆菌的panD基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示；所述aspC基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.7所示；所述aspB基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.8所示；所述aspA基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.9所示；所述sdhC基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.10所示；所述ppc基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.11所示；所述pyc基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.12所示；所述cycA基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.13所示；所述Trc启动子的核苷酸序列如SEQ ID NO.14所示。

2.一种权利要求1所述的大肠杆菌益生菌在微生物发酵法制备β‑丙氨酸中的应用。

3.如权利要求2所述的应用，其特征在于，所述的应用为：将所述的大肠杆菌益生菌接种到含有50 mg/L卡那霉素的发酵培养基中，30 ℃，180 rpm条件下培养菌体生长至OD600=

0.5，添加IPTG至终浓度0.25mM诱导基因表达，继续培养48 h至发酵结束，获得含β‑丙氨酸的发酵液，将发酵液分离纯化，获得β‑丙氨酸；

所述发酵培养基配方如下：葡萄糖18~22 g/L，(NH4)2SO4 14~18 g/L，酵母提取物 2~

3g/L，KH2PO4 1~2 g/L，MgSO4 0.2~1 g/L，CaCO3 13~17 g/L，VB1  0.3~0.5 mg/L，VB12  0.3~

0.5 mg/L，微量元素溶液0.5 1.5 mL/L，溶剂为水，无需调节pH值；微量元素溶液的组分如~

下：8~12 g/L CaCl2，8~12 g/L FeSO4·7H2O，0.8~1.2 g/L ZnSO4·7H2O，0.1~0.3 g/L CuSO4，0.01~0.04 g/L NiCl2·7H2O，溶剂为去离子水。

4.如权利要求3所述的应用，其特征在于，所述大肠杆菌益生菌在发酵前，先将所述大肠杆菌益生菌接种至含有50 mg/L卡那霉素的LB培养基，37℃、180 rpm过夜，制备种子液，将种子液以体积浓度2%的接种量接种至含有50 mg/L卡那霉素的发酵培养基。

5.如权利要求3所述的应用，其特征在于，所述发酵在发酵罐中进行：将所述大肠杆菌益生菌接种至含有50 mg/L卡那霉素抗性LB平板上，37 ℃培养过夜，挑取单菌落至含有50 mg/L卡那霉素抗性的LB试管，37 ℃、150‑180 rpm培养过夜，制备一级种子液；将一级种子液以体积浓度5%的量接种至含有50 mg/L卡那霉素的LB培养基中，37 ℃、150‑180 rpm培养过夜，作为二级种子液；将二级种子液按体积浓度15%接种至装有含有50 mg/L卡那霉素发酵培养基的发酵罐中，并加入终浓度为0.2 mM的IPTG，在30 ℃、300‑500 rpm、通气量4 V/V·min条件下发酵培养，当pH值高于6.80，自动补料开启，补加补料培养基至pH低于6.80时停止补料，培养70‑81h，获得含β‑丙氨酸的发酵液；

发酵罐中发酵培养基配方：葡萄糖20 g/L，(NH4)2SO4 16 g/L，酵母提取物 2 g/L，KH2PO4 2 g/L，MgSO4 0.5 g/L，VB1 0.5 mg/L，VB12 0.2 mg/L，1 mL/L微量元素溶液，溶剂为去离子水；微量元素溶液的组成：10 g/L CaCl2，10 g/L FeSO4·7H2O，1 g/L ZnSO4·7H2O，

0.2 g/L CuSO4，0.02 g/L NiCl2·7H2O，溶剂为去离子水；

所述补料培养基组成：葡萄糖500 g/L，(NH4)2SO4 10 g/L，酵母提取物 2g/L，KH2PO4 14 g/L，MgSO4 8 g/L，0.5 mg/L VB1，0.2 mg/L VB12，溶剂为水，用14％的氨水调节pH为6.8。

6.如权利要求5所述的应用，其特征在于，补料速度为25 mL/h，补料培养基总添加量为

1700 mL/2L。