1.一种基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，步骤如下：

S1：激光诱导石墨烯基底电极获取：将聚酰亚胺薄膜贴置于基板材料上，依次使用丙酮和无水乙醇对其表面进行清洗，控制激光在聚酰亚胺薄膜表面扫描直写，得到预设的阵列激光诱导石墨烯三电极基底，其中三电极为工作电极、参比电极和对电极；然后改变作用激光的功率和诱导速率，再次在激光诱导石墨烯电极基底表面扫描直写，得到二次处理后的激光诱导石墨烯电极基底，记为LIG；

S2：激光诱导石墨烯图案转移模块构建：首先通过真空处理除去EVA热熔胶中的气泡，然后将其贴覆于LIG表面，并继续在EVA热熔胶上方依次覆盖PET离型膜和金属压板，得到的样品记为LIG/EVA；

S3：激光诱导石墨烯基底转移：将步骤S2所得LIG/EVA置于恒温加热台进行高温热熔，热熔后移去金属压板与PET离型膜，并在室温中退火后进行固化处理，使激光诱导石墨烯图案转移并固定至EVA热熔胶上；最后依次分离基板和聚酰亚胺薄膜，即实现激光诱导石墨烯电极的转移，得到转移后激光诱导石墨烯，记为LIG‑EVA；

S4：金纳米粒子的合成：将氯金酸和去离子水混合，在油浴锅中加热至溶液沸腾，并将一定量的柠檬酸钠溶液滴入混合溶液中，继续加热，溶液变为酒红色溶液时停止加热，即得到Au NPs溶液；

S5：四面体DNA复合物的制备：取四种单链DNA和适配体，分别记为S1、S2、S3、S4和apt；分别用TE缓冲液溶解，然后再用TM缓冲液稀释，得到5种TE稀释液，分别记为S1稀释液、S2稀释液、S3稀释液、S4稀释液和apt稀释液；然后在apt稀释液中加入三(2‑羧乙基)膦，得到apt‑TCEP稀释液；

最后将S1稀释液、S2稀释液、S3稀释液、S4稀释液和apt‑TCEP稀释液按照等比例混合后的混合液，进行加热反应，加热反应后再进行退火，得到的四面体DNA复合物记为TDN‑cDNA‑apt溶液；

S6：依次在LIG‑EVA的工作电极区域逐层修饰Au NPs溶液、TDN‑cDNA‑apt溶液、6‑巯基‑

1‑己醇以及亚甲基蓝，在每次修饰后均进行电极孵育；最终得到用于微囊藻毒素‑LR检测的激光诱导石墨烯基生物传感器，记为LIG‑EVA/Au/TDN‑cDNA‑apt/MCH/MB。

2.根据权利要求1所述的基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，所述步骤S1中，设计的石墨烯电极基底图案包括相互独立的三部分，对应记为工作电极、参比电极、对电极，各电极均可划分为上方传感区和下方导线区，其中工作电极位于中间，参比电极、对电极分设两侧；工作电极传感区为直径为4.5mm的圆形区域，便于溶液的分散和修饰；而对电极传感区为拱形结构，拱形的内侧为工作电极传感区；

所述聚酰亚胺薄膜厚度为80‑120μm，所用基板选择厚度为1mm的金属紫铜板；诱导激光为10.6um的二氧化碳激光，激光功率和诱导速率分别为3W和400mm/s；改变后的作用参数为

3.6W激光功率和285mm/s的诱导速率。

3.根据权利要求1所述的基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，步骤S2中，EVA热熔胶贴覆于LIG表面厚度为0.05‑0.2mm；覆盖PET离型膜厚度为0.1‑0.2mm；金属压板为5mm厚的紫铜板；步骤S3中，高温热熔的温度控制为85‑110℃，热熔时间为5‑8min；室温退火的温度为20‑25℃，退火时间为8‑10min；固化处理的温度为‑

18℃，固化时间为10‑20min。

4.根据权利要求3所述的基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，热熔温度控制为85℃，热熔时间为5min；室温退火的温度为25℃，退火时间为10min；低温固化的温度为‑18℃，固化时间为10min。

5.根据权利要求1所述的基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，步骤S4中，氯金酸、去离子水、柠檬酸钠溶液的体积比为0.2：25：0.25，其中氯金酸的浓度为0.1M，柠檬酸钠溶液的浓度为100mg/mL；继续加热的时间为15‑20min。

6.根据权利要求1所述的基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，所述步骤S5中，S1、S2、S3、S4和apt的DNA序列依次为：S1 TATCACCAGGCAGTTGACAGTGTAGCAAGCTGTAATAGATGCGAGGGTCCAATAC；

S2 TCAACTGCCTGGTGATAAAACGACACTACGTGGGAATCTACTATGGCGGCTCTTC；

S3 TTCAGACTTAGGAATGTGCTTCCCACGTAGTGTCGTTTGTATTGGACCCTCGCAT；

S4  ACATTCCTAAGTCTGAAACATTACAGCTTGCTACACGAGAAGAGCCGCCATAGT AGTCATGGTGGTCCTGTTTGGCGCCCTCCGC；

apt  SH‑GCGGAGGGCGCCAAACAGGACCACCATGACAATTACCCATACCACCTCATT ATGCCCCATCTCCGC；

S1稀释液、S2稀释液、S3稀释液、S4稀释液和apt稀释液的浓度均为10μM；三(2‑羧乙基)膦在apt‑TCEP稀释液中的终浓度为1mM；

加热反应条件为95℃保持2min；退火的条件为25℃温度持续30‑90s。

7.根据权利要求1所述的基于热熔胶的激光诱导石墨烯电极的生物传感器的制备方法，其特征在于，步骤S6中，Au NPs溶液的浓度为6nM，TDN‑cDNA‑apt溶液浓度为2μM，MCH的浓度为1mM，MB的浓度为5μM；Au NPs和TDN‑cDNA‑apt的修饰用量均为10μL，MCH和MB的修饰用量均为8μL；Au NPs溶液修饰后的孵育时间为20‑40min，孵育温度为20‑25℃；TDN‑cDNA‑apt溶液修饰后的孵育时间为4‑12h，孵育温度为4℃；MCH溶液修饰后的孵育时间为30‑

50min，孵育温度为20‑25℃；MB溶液修饰后的孵育时间为20‑100min，孵育温度为20‑25℃。

8.根据权利要求1‑7任一项所述方法制备的激光诱导石墨烯基生物传感器用于检测水中MC‑LR的用途，其特征在于，步骤如下：S1：首先配制不同浓度的MC‑LR标准液，将不同浓度的MC‑LR标准液对应修饰在LIG‑EVA/Au/TDN‑cDNA‑apt/MCH/MB的工作电极表面，室温孵育一段时间，完成传感界面对MC‑LR的识别，记为LIG‑EVA/Au/TDN‑cDNA‑apt/MCH/MB+MC‑LR；其中不同浓度的MC‑LR标准液有各自对应的响应电流信号值；

S2：标准测试曲线的建立；

将步骤S1孵育得到的LIG‑EVA/Au/TDN‑cDNA‑apt/MCH/MB+MC‑LR传感器与电化学工作站相连接，使用差分脉冲伏安法对传感器的响应电流信号进行测试，得到对应的电流信号记为IMB，MC‑LR标准液的浓度对数值与IMB呈负线性相关，根据IMB与MC‑LR标准液的浓度的对数关系建立得到标准测试曲线；

S3：样品中MC‑LR浓度的检测；

首先获取待测样品液，在LIG‑EVA/Au/TDN‑cDNA‑apt/MCH/MB传感界面修饰一定量的待测样品液，室温孵育一段时间后按照步骤S2中响应电流信号测试的方法进行电化学测试，得到响应电流信号并带入步骤S2构建的标准测试曲线，即可计算得到CMC‑LR，实现未知样品中MC‑LR浓度的检测。

9.根据权利要求8所述的用途，其特征在于，步骤S1中，MC‑LR标准液的修饰用量为10μL，MC‑LR标准液的浓度为10fM‑100nM，孵育时间为10‑60min；步骤S2中，差分脉冲伏安法测试的具体条件为；扫描电压范围‑0.6‑0V，振幅为0.05V，脉冲宽度为0.05s；

步骤S3中，获取待测样品液需进行预处理；预处理操作具体为：取样品液，用不锈钢筛过滤后，再用0.22μm滤膜过滤纯化，即完成样品的预处理，得到待测样品液。

10.根据权利要求9所述的用途，其特征在于，孵育时间为50min。