1.一种诱导间充质干细胞分化为胰岛β细胞的方法，其特征在于，所述方法包括：预诱导和正式诱导；所述预诱导中微囊泡MV工作浓度为35‑40μg/mL，烟酰胺工作浓度为5mM，胰岛素转铁蛋白‑硒ITS工作浓度为0.5％；所述正式诱导中，微囊泡MV工作浓度为70‑80μg/mL，烟酰胺工作浓度为5‑10mM，胰岛素转铁蛋白‑硒ITS工作浓度为0.5‑1％；

干细胞培养体系中，采用无细胞外囊泡EV的血清；

所述微囊泡MV来源于大鼠胰岛素瘤细胞，所述微囊泡MV的获得，包括：培养大鼠胰岛素瘤细胞，每36‑48h收集一次培养基，300‑2000g离心去除死细胞和细胞碎片，12000g超速离心去除上清获得沉淀，用PBS重悬沉淀，将沉淀定量到150‑190μg/mL，4℃保存备用。

2.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述微囊泡MV的粒径范围为50nm‑500nm。

3.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述预诱导的诱导时间为2‑4天；所述正式诱导的诱导时间为15‑18天。

4.根据权利要求1所述的方法，其特征在于，包括：将间充质干细胞铺板后，待细胞汇合

20％‑40％时，加入微囊泡MV工作浓度为35‑40μg/mL的预诱导体系；培养2‑4天，加入微囊泡MV工作浓度为70‑80μg/mL的正式诱导体系。

5.一种诱导间充质干细胞分化为胰岛β细胞的诱导剂，其特征在于，所述诱导剂包括：预诱导剂和正式诱导剂；

所述预诱导剂中，微囊泡MV工作浓度为35‑40μg/mL，烟酰胺工作浓度为5mM，胰岛素转铁蛋白‑硒ITS工作浓度为0.5％；

所述正式诱导剂中，微囊泡MV工作浓度为70‑80μg/mL，烟酰胺工作浓度为5‑10mM，胰岛素转铁蛋白‑硒ITS工作浓度为0.5‑1％；

所述微囊泡MV为具胰岛β细胞功能的细胞所产生的微囊泡，所述微囊泡MV来源于大鼠胰岛素瘤细胞，所述微囊泡MV的获得包括：培养大鼠胰岛素瘤细胞，每36‑48h收集一次培养基，300‑2000g离心去除死细胞和细胞碎片，12000g超速离心去除上清获得沉淀，用PBS重悬沉淀，将沉淀定量到150‑190μg/mL，4℃保存备用。

6.一种诱导间充质干细胞分化为胰岛β细胞的培养基，其特征在于，包括：预诱导培养基和正式诱导培养基；所述培养基中，均含有具胰岛β细胞功能的细胞所产生的微囊泡MV、DMEM、8‑10％不含EV的血清、烟酰胺和胰岛素转铁蛋白‑硒ITS；

所述微囊泡MV来源于大鼠胰岛素瘤细胞，所述微囊泡MV的获得包括：培养大鼠胰岛素瘤细胞，每36‑48h收集一次培养基，300‑2000g离心去除死细胞和细胞碎片，12000g超速离心去除上清获得沉淀，用PBS重悬沉淀，将沉淀定量到150‑190μg/mL，4℃保存备用；

所述微囊泡MV的粒径为50‑500nm；

所述预诱导培养基中，微囊泡MV工作浓度为35‑40μg/mL，烟酰胺工作浓度为5mM，胰岛素转铁蛋白‑硒ITS工作浓度为0.5％；

所述正式诱导培养基中，微囊泡MV工作浓度为70‑80μg/mL，烟酰胺工作浓度为5‑10mM，胰岛素转铁蛋白‑硒ITS工作浓度为0.5‑1％。

7.权利要求5所述的诱导剂或权利要求6所述的培养基在提高间充质干细胞诱导分化为胰岛β细胞的诱导效率中的应用。