1.一种转氨酶‑PLP共固定化酶，其特征在于所述共固定化 酶由按下方法制备获得：(1)SEQ ID NO.1所示核苷酸序列转化到宿主菌大肠杆菌中，得到基因工程菌接种至含有终浓度50μg/mL卡那霉素抗性的LB液体培养基，37℃、200rpm下培养8h，再以体积浓度

10％接种量接种至新鲜的含有终浓度50μ/mL卡那霉素抗性的发酵培养基中，于37℃、

500rpm下培养至菌体OD600达6～8，加入终浓度为0.1mM的IPTG，28℃下诱导培养11h，发酵液

4℃、8000rpm离心10min，弃去上清液，收集沉淀，获得湿菌体悬浮于的pH7.0～9.0缓冲液中得到50～150g/L的菌悬液，菌悬液经细胞破碎、离心，得到转氨酶粗酶液；所述pH 7.0～9.0缓冲液为Tris‑HCl、甘氨酸‑NaOH、PB、Na2CO3‑NaHCO3或三乙醇胺‑HCl缓冲液；

(2)环氧树脂LX‑1000HFA用蒸馏水浸泡12～18h，抽滤取滤饼，得到预处理后的环氧树脂备用；

(3)粗酶液中加入0.1～8mM的辅酶磷酸吡哆醛，加入步骤(2)预处理后的环氧树脂，环氧树脂添加量为20～30mg/100mL粗酶液；

(4)在15～45℃、200～300rpm条件下水浴搅拌固定化6～48h，抽滤，滤饼用pH 7.0～

9.0缓冲液清洗两次，抽滤去除缓冲液，即得所述转氨酶‑PLP共固定化酶。

2.权利要求1所述转氨酶‑PLP共固定化酶的制备方法，所述方法包括：(1)SEQ ID NO.1所示核苷酸序列转化到宿主菌大肠杆菌中，得到基因工程菌经发酵培养，获得湿菌体悬浮于的pH 7.0～9.0缓冲液中得到菌悬液，菌悬液经细胞破碎、离心，得到转氨酶粗酶液；

(2)环氧树脂LX‑1000HFA用蒸馏水浸泡12～18h，抽滤取滤饼，得到预处理后的环氧树脂备用；

(3)粗酶液中加入0.1～8mM的辅酶磷酸吡哆醛，加入步骤(2)预处理后的环氧树脂，环氧树脂添加量为20～30mg/100mL粗酶液；

(4)在15～45℃、200～300rpm条件下水浴搅拌固定化6～48h，抽滤，滤饼用pH 7.0～

9.0缓冲液清洗两次，抽滤去除缓冲液，即得所述转氨酶‑PLP共固定化酶。

3.权利要求1所述的转氨酶‑PLP共固定化酶在不对称还原制备西他列汀中间体中的应用。

4.如权利要求3所述的应用，其特征在于所述应用为：以转氨酶‑PLP共固定化酶为催化剂，以(3R)‑3‑酮基‑1‑[3‑(三氟甲基)‑5,6,7,8‑四氢‑1,2,4‑三唑并[4,3‑a]吡嗪‑7‑基]‑

4‑(2,4,5‑三氟苯基)丁‑1‑酮为底物，以二甲基亚砜、N,N‑二甲基甲酰胺、乙醇、乙腈、甲醇、异丙醇或四氢呋喃为助溶剂，于pH 9.0、100mM三乙醇胺缓冲液中，以丙氨酸、异丙胺、二乙胺、氨水、甘氨酸、谷氨酸或三乙胺氨基为氨基供体，在20～50℃、400～700rpm条件下反应

12～36h，制得西他列汀中间体(3R)‑3‑氨基‑1‑[3‑(三氟甲基)‑5,6,7,8‑四氢‑1,2,4‑三唑并[4,3‑a]吡嗪‑7‑基]‑4‑(2,4,5‑三氟苯基)丁‑1‑酮。

5.如权利要求4所述的应用，其特征在于：助溶剂体积用量为20～80％。

6.如权利要求4所述的应用，其特征在于：所述转氨酶‑PLP共固定化酶用量为50～

300g/L反应体系，底物终浓度为25～150g/L，氨基供体摩尔浓度为底物的2～16倍。

7.如权利要求4所述的应用，其特征在于：所述助溶剂为二甲基亚砜、体积用量为50％，所述氨基供体为异丙胺、摩尔浓度为底物的8倍。