1.脂多糖诱导的Caco‑2/RAW264.7细胞共培养模型的建立方法，其特征在于，该方法包括以下步骤:

1）Caco‑2细胞在MEM培养基，RAW264.7细胞在DMEM培养基中分别进行细胞培养；培养条件为pH 7.4，5%CO2，37℃，95%空气，恒湿培养21天，培养基每隔1‑2天更换一次；

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2）将步骤1）培养结束后的Caco‑2细胞以1×10个/孔密度接种于24孔Transwell板上室的AP侧，PC膜，4μm，和步骤1）相同的培养条件下孵化21天，每24小时跟换一次培养液；

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3）RAW 264.7细胞以1×10个/孔的密度接种于24孔板，和步骤1）相同的培养条件下孵化1天；

4）将孵化21天的载有Caco‑2细胞的Transwell上室转移到孵化1天的载有RAW264.7细胞的24孔板，此时AP侧为Caco‑2细胞，BL侧为RAW264.7细胞；

5）将脂多糖溶于PBS中，配置成50μg/mL的母液，过0.22μm针孔式过滤器；用10%DMEM培养基稀释成1μg/mL LPS‑10%DMEM溶液；

6）在BL侧加入1μg/mL的LPS‑10%DMEM培养基孵化3h，用ELISA试剂盒检测AP侧炎症因子浓度，形成肠道炎症模型。

2.如权利要求1所述的脂多糖诱导的Caco‑2/RAW264.7细胞共培养模型的建立方法，其特征在于步骤1）中MEM培养基中含有20%胎牛血清、1%HEPES、1%NEAA、1%L‑谷氨酰胺、1%丙酮酸钠、100U/mL青霉素和100 mg/mL链霉素。

3.如权利要求1所述的脂多糖诱导的Caco‑2/RAW264.7细胞共培养模型的建立方法，其特征在于步骤1）中DMEM培养基中含有10%胎牛血清、1%HEPES、1%NEAA、1%L‑谷氨酰胺、100U/mL青霉素和100 mg/mL链霉素。

4.如权利要求1所述的脂多糖诱导的Caco‑2/RAW264.7细胞共培养模型的建立方法，其‑2特征在于步骤2）中平均每三天检测一次细胞的跨膜电阻值，跨膜电阻值大于300Ωcm  即可视为单层致密完整。

5.如权利要求1所述的脂多糖诱导的Caco‑2/RAW264.7细胞共培养模型的建立方法，其特征在于步骤2）中平均7天检测一次碱性磷酸酶活性，上室AP侧/下室BL侧比值越大说明细胞极化程度越高。

6.权利要求1‑5任一所述的脂多糖诱导的Caco‑2/RAW264.7细胞共培养模型在研究其对矢车菊素‑3‑葡萄糖苷纳米脂质体吸收作用中的应用。